Влияние концентрации сахарозы на рост и развитие регенерантов земляники садовой

Цель исследования заключалась в оптимизации этапов микроклонального размножения земляники садовой. Для введения в культуру in vitro сорта Елизавета 2 и селекционной линии К₁₀ в качестве экспланта использовали точки роста усов первого порядка с применением схемы стерилизации: мыльный раствор; проточная вода; 70 % этанол; 12 % H₂ O₂ . На этапе собственно микроразмножения применяли среду Мурасиге–Скуга, с концентрацией сахарозы 0, 10, 20, 30 г/л, дополненную 0,5 мг/л 6-бензиламинопурином (БАП). Заключительный этап работы включал определение способности регенерантов адаптироваться к условиям ex vitro. В качестве субстрата использовали вермикулит, повторность опыта трехкратная. Произведен учет по количеству корней и микрорастений с экспланта, а также их жизнеспособности на этапе адаптации. Сорт Елизавета 2 и линия К₁₀ не имели статистически значимых различий по увеличению количества микропобегов. У сорта Елизавета 2 на варианте с добавлением 30 г/л сахарозы отмечена тенденция снижения на 2,03 шт. (НСР₀₅ = 4,09), а количество корней на 3,23 шт. статистически значимо превышало значение показателя на контрольной среде (20 г/л сахарозы; НСР₀₅= 2,64). На питательной среде с добавлением 10 г/л сахарозы количество корней снижалось на 3,77 шт., а на среде без сахарозы – на 8,38 шт. Селекционная линия К₁₀ не формировала корни на варианте без добавления сахарозы, а на остальных вариантах статистически значимых отклонений не наблюдалось. В условиях ex vitro микрорастения характеризовались 88,8–100 % жизнеспособностью после культивирования in vitro на вариантах с 20–30 г/л сахарозы. Адаптированные микрорастения, культивируемые in vitro на питании с 30 г/л сахарозы, имеют мощную корневую систему (Елизавета 2 на 6,42 шт. больше, линия К₁₀ на 4,23 шт., НСР₀₅ = 4,86) в сравнении с показателями на контрольном варианте.

1. Плоды земляники садовой (Fragaria× ananassa Duch.) как ценный источник пищевых и биологически активных веществ / М.Ю. Акимов, И.В. Лукъянчук, Е.В. Жбанова [и др.] // Химия растительного сырья. – 2020. – № 1. – С. 5–18. – DOI: 10.14258/jcprm.2020015511.

2. The status and future of the strawberry industry in the United States // J.B. Samtani, C.R. Rom, H. Friedrich [et al.] // HortTechnology. – 2019. – Vol. 29. – N 1. – P. 11–24. – DOI:10.21273/HORTTECH04135-18.

3. Protective effects of non-extractable phenolics from strawberry against inflammation and colon cancer in vitro / M. Huang, Y. Han, L. Li [et al.] // Food Chemistry. – 2022. – Vol. 374. – Article 131759. – DOI: 10.1016/j.foodchem.2021.131759.

4. Козлова И.И., Лукъянчук И.В., Жбанова Е.В. Сортимент и технология производства высококачественных ягод земляники садовой // Достижения науки и техники АПК. – 2019. – Т. 33, № 2. – С. 45–49. – DOI: 10.24411/0235-2451-2019-10211.

5. Айсанов Т.С. Результаты апробации модифицированной питательной среды в промышленной технологии производства безвирусного посадочного материала земляники методом in vitro // Научные труды СКФНЦСВВ. – 2023. – Т. 37, № 1. – С. 95–99. – DOI: 10.30679/2587-9847-2023-37-95-99.

6. Franova J., Pribylova J., Koloniuk I. Molecular and biological characterization of a new strawberry cytorhabdovirus // Viruses. – 2019. – Vol. 11, No. 11. – Article 982. – DOI: 10.3390/v11110982.

7. Матушкина О.В., Пронина И.Н. Технологические аспекты размножения земляники in vitro // Селекция и сорторазведение садовых культур. – 2019. – Т. 6, № 1. – С. 74–77.

8. Ламонова И.А., Верзилин А.В. Влияние стерилизатора на введение в культуру in vitro земляники садовой // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. – 2015. – № 4. – С. 57–61.

9. Puscan R., Castro E.R.V., Chaname C.E.M. Combined effect of cytokinins on the in vitro propagation of three strawberry cultivars // Revista Caatinga. – 2024. – Vol. 37. – Article e12180-e12180. – DOI: 10.1590/1983-21252024v3712180rc.

10. Mixotrophic in vitro cultivations: the way to go astray in plant physiology / H. Sevcikova, Z. Lhotakova, J. Hamet [et al.] // Physiologia plantarum. – 2019. – Vol. 167, N 3. – P. 365–377. – DOI: 10.1111/ppl.12893.

11. Naser S.M., Abdulhussein M.A.A. Effect of sucrose in strawberry micro-propagation using platform bioreactor under temporary immersion system // Revista Bionatura. – 2023. – Vol. 4. – P. 1–7. – DOI: 10.21931/RB/CSS/2023.08.04.94.

12. Kornatskiy S. The final stage of micropropagation of garden strawberries // E3S Web of Conferences. – EDP Sciences. – 2024. – Vol. 486. – Article 01016. – DOI: 10.1051/e3sconf/202448601016.

13. Efficient ex vitro rooting, acclimatization, and cultivation of Curcuma longa L. from mycorrhizal fungi / M.P.S. Ferrari, R.M.S. Cruz, M.S. Queiroz [et al.] // Journal of Crop Science and Biotechnology. – 2020. – Vol. 23. – P. 469–482. – DOI: 10.1007/s12892-020-00057-2.

14. Гусев Д.А., Плаксина Т.В. Развитие микрорастений сортов малины (Rubus idaeus L.) алтайской селекции на этапах ризогенеза in vitro и адаптации ex vitro // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. – 2022. – № 9(215). – С. 31–36. – DOI: 10.53083/1996-4277-2022-215-9-31-36.

15. Рост и развитие регенерантов земляники ананасной (Fragaria× ananassa (Weston) Duchesne ex Rozier) на различных вермикулитовых субстратах при переводе из in vitro в ex vitro / М.А. Ярцева, А.Б. Хвостова, Л.А. Иванова, М.В. Слуковская // Труды Карельского научного центра РАН. – 2024. – № 7. – С. 91–101. – DOI: 10.17076/eb1915.