Некоторые аспекты управления репродукционной функцией у самок осетровых рыб

Проведены две серии экспериментов по влиянию препарата Е-селен на репродуктивную функцию осетровых рыб с разными способами внедрения препарата в организм: через корм и инъецированием. Показана эффективность действия Е-селена в двух сериях экспериментов. Выявлена его способность ускорять процесс созревания ооцитов вследствие стимуляции генеративного обмена и приведения его в соответствие с этапами полового цикла исходя из биохимических показателей крови. На усиление генеративного обмена указывает повышение концентрации в крови в 1,4 раза к концу 50-суточного эксперимента общего белка и бета-липопротеидов, в состав которых в период вителлогенеза входит ововителин (вителлогенин), а также умеренное увеличение концентрации гемоглобина. Отмечено, что обмен веществ у контрольных рыб в большей мере, чем у экспериментальных, направлен на соматический рост, вследствие чего средняя масса самок в контроле была выше, чем опыте, в первой серии экспериментов в 1,5 раза при неизменной массе опытных рыб и увеличении на 6% у контрольных во второй серии. Отмечена роль препарата как стабилизатора физиологического состояние самок из-за его высоких антиоксидантных свойств. При его применении исчезают имеющиеся признаки стрессового состояния, в отличие от контрольных рыб, у которых они выявляются: повышенный уровень холестерина, скорость оседания эритроцитов (СОЭ), снижение концентрации гемоглобина. Наибольший эффект от применения препарата получен при орошении Е-селеном корма, при этом количество созревших рыб после 50 суток эксперимента было в 2,7 раза больше, чем в контроле, с одновременным снижением в 2 раза числа незрелых рыб. В случае инъецирования самок этим препаратом количество рыб, находящихся на IV стадии зрелости гонад, у экспериментальной группы по истечении 50 суток увеличилось в 1,7 раза, у контрольных, наоборот, снизилось в 1,2 раза при неизменной доле самок на III стадии зрелости гонад.

1. Brooks S., Tyler C.R., Sumpter J.P. Egg quality in fish: what makes a good egg? // Rev. Fish Biol and Fish. – 1997. – Vol. 7. – P. 387–416. https://doi.org/10.1023/A:1018400130692.

2. Izquierdo M., Fernandez-Palacios H., Tacon A. Effect of brood stock nutrition on reproductive performance of fish // Aquaculture. – 2001. – Vol.197(1-4). – P. 25 – 42. – https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00581-6.

3. Bobe J., Labbe C. Egg and sperm quality in fish. Gen Comp Endocrinol // General and comparative endocrinology. – 2009. – Vol. 165 (3). – P. 535–548. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.02.011.

4. Wanke T., BrämickU., Mehner T. High stock density impairs growth, female condition and fecundity, but not quality of early reproductive stages in vendace (Coregonus albula). Fisheries Research. – 2017. – Vol. 186. – P. 159–167. – https://doi.org/10.1016/j.fishres.2016.08.028.

5. Effect of Dietary Soybean Lecithin on Reproductive Performance of Chinese Mitten Crab Eriocheir Sinensis (H. Milne-Edwards) Broodstock / L.Y. Sui, X.G. Wu, M. Wille [et al.] // Aquacult. Int. – 2009. – Vol. 17 (1). – P. 45–56. – https://doi.org/ 10.1007/s10499-008-9178-6.

6. Effects of Parental Diets Supplemented With Different Lipid Sources on Octopus Maya Embryo and Hatching Quality / J.F. Tercero, C. Rosas, M. Mascaro[et al.] // Aquaculture. – 2015. – Vol. 448. – P. 234–242. – https://doi.org/ 10.1016/j. aquaculture.2015.05.023.

7. Effects of different dietary oils on egg quality and reproductive performance in rainbow trout Oncorhynchus mykiss / M. Yıldız, A. Ekici, G. Yamaner [et al.] // Animal Reproduction Science. – 2020. – Vol. 221. – P. 106545. – https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2020.106545.

8. Effects of different dietary lipid resources on sperm quality and reproductive success in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / M. Yıldız, S. Ofori-Mensah, M. Arslan [et al.] // Aquaculture Research. – 2021. – Vol. 52(8). – P. 1–11. – https://doi.org/10.1111/are.15226.

9. Volkoff H., London S. Nutrition and reproduction in fish / Encycl. Reprod. –2018. – Vol. 6. – P. 743–748. – https://doi.org/ 10.1016/B978-0-12-809633-8.20624-9.

10. Bromage N.R., Roberts R.J. Brood management and egg and larval quality // Blackwell Science Oxford OX2 OEL. – 1995. – 424 p.

11. Gamete quality and spawning in captive Murray cod broodstock / B.A. Ingram, H.K. Ho, G.M. Turchini, M. Holland // Fisheries. Victoria Research Report Series. – 2012. – N 58. – 69 p.

12. Mylonas C.C., Zohar Y. Promoting oocytematuration, ovulation and spawning in farmed fish // In The Fish Oocyte. – Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, 2007. – Р. 437–474. – https://doi.org/10.1007/978-1-4020-6235-3_15.

13. Description of the annual reproductive cycle of wreckfish Polyprion americanus in captivity / M. Papadaki, J.B. Peleteiro, B. Alvarez-Blázquez [et al.] // Fishes. – 2018. – Vol. 3 (4). – P. 43. – https://doi.org/10.3390/fishes3040043.

14. Effective components in cuttlefish meal and raw kri ll for improvement of quality of red sea bream Pagrus major eggs / T. Watanabe, M. Lee, J. Mizutani [et al.] // Nippon Sui san Gakkaishi. – 1991. – Vol. 519917(4) – P. 681–694.

15. Izquierdo M.S., Fernández-Palacios H. Nutritional requirements of marine fish larvae and broodstoc // Cahiers OPTIONS Mediterraneennes. – 1997. – N. 22. – P. 243–264.

16. Efrizal E., Rusnam R. The Influence of dietary vitamin E on the gonad development of blue swimming crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758) // Australian Journal of Basic and Applied Sciences. – 2017. – Vol. 11 (1). – P. 7–15.

17. El-Sayed A.M., Izquierdo M., The importance of vitamin E for farmed fish-a review // Reviews in Aquaculture. – 2021. – P. 1–16. – https://doi.org/10.1111/raq.12619.

18. Effect of a krill meal supplementation in soft - elects on spawning and quality of egg of yellowtail / V. Verakunpiriya, K. Watanabe, K. Mushiake [et al.] // Fisheries Science. – 1997. – Vol. 63 (3) – P. 433–439.

19. Использование препаратов селена при выращивании жеребят и телят / С.А. Шевченко, А.И., Шевченко, О.А. Багно [и др.] // Вестник НГАУ. – 2017. – № 3 (44). – С. 104–114.

20. Combined effect of dietary α-tocopherol and n−3 HUFA on egg quality of gilthead seabream broodstock (Sparus aurata) / H. Fernández-Palacios, M.S. Izquierdo, M. Gonzalez [et al.] // Aquaculture. – 1998. – Vol. 161. – P. 475–476.

21. Antioxidant capacity is correlated with steroidogenic status of the corpus luteum during bovine estrous cycle / R. Rapoport, D. Sklan D. Wolfenson [et al.] // Biochem. Biophys. Acta. – 1998. – Vol. 1380. – P. 133–140.

22. Watanabe T., Kirov V., Satoh S. Trace minerals in fish nutrition // Aquaculture. – 1997. – Vol. 151. – N. 1–4. – P. 185–207.

23. Rayman M.P. The importance of selenium to human health // The Lancet. – 2000. – Vol. 356 (9225). – P. 233–241. – https://doi.org/10.1016/S0140-6736(00)02490-9.

24. Lobanov A.V., Hatfield D.L., Gladyshev V.N. Eukaryotic selenoproteins and selenoproteomes // Biochimica Et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects. – 2009. – Vol. 1790 (11). – P. 1424–1428. – https://doi. org/10.1016/j.bbagen.2009.05.014.

25. Effects of nanoSelenium supplementation in plant protein-rich diet on reproductive performance and egg and larval quality of female Arabian yellowfin sea bream (Acanthopagrus arabicus) / S. Saffari, S. Keyvanshokooh, M. Torfi Mozanzadeh, A. Shahriari // Aquaculture Nutrition. – 2021. – 27. – P. 1–13. – https://doi.org/10.1111/ anu.13332.

26. Deng D.-F., Hung, S.S., Teh, S.J. Selenium depuration: Residual effects of dietary selenium on Sacramento splittail (Pogonichthys macrolepidotus) // Science of the Total Environment. – 2007. – Vol. 377 (2–3). – P. 224–232. – https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2007.02.025.

27. The pathology of selenium deficiency in Cyprinus carpio L. / K. Wang, C. Peng, J. Huang [et al.] // Journal of Fish Diseases. – 2013. – Vol. 36 (7). – P. 609–615. – https://doi.org/ 10.1111/jfd.12030.

28. Safe limits of selenomethionine and selenite supplementation to plant-based Atlantic salmon feeds / M. H.G.Berntssen, M. Betancor, M. J. Caballero [et al.] // Aquaculture. – 2018. – Vol. 495 (1). – P. 617–630. – https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.06.041.

29. Optimum selenium levels in diets high in plant-based feedstuffs for gilthead sea bream (Sparus aurata) fingerlings / D. Domínguez, Z. Sehnine, P. Castro[et al.] // Aquaculture Nutrition. – 2020. – Vol. 26 (2). – P. 579–589. – https://doi.org/10.1111/anu.13019.

30. An overview of the ongoing insights in selenium research and its role in fish nutrition and fish health / K.U. Khan, A. Zuberi, J.B.K. Fernandes [et al.] // Fish Physiology and Biochemistry. – 2017. – Vol. 43 (6). – P. 1689–1705. – https://doi.org/ 10.1007/s10695-017-0402-z.

31. Влияние препарата Е-селен на рост и физиологические показатели гибрида русский осётр х ленский осётр / Г.Ф. Металлов, В.А. Григорьев, А.В. Ковалёва [и др.] // Вестник Южного научного центра. – 2013. – Т. 9, № 2. – С. 57–67.

32. Effects of Dietary Lipid Sources on Flavour Volatile Compounds of Brown Trout (Salmo trutta L.) / G.M. Turchini, T. Mentasti, F. Caprino [et al.] // Fillet. J. Appl. Ichthyol. – 2010. – Vol. 20 (1). – P. 71–75. – https://doi.org/ 10.1046/j.0175-8659.2003.00522.x.

33. Influence of Different Dietary Lipid Sources on the Growth, Tissue Fatty Acid Composition, Histological Changes and Peroxisome Proliferator-Activated Receptor γ Gene Expression in Large Yellow Croaker (Pseudosciaena Crocea R.) / X.X. Wang, Y.J. Li, C.L. Hou [et al.] // Aquac. Res. – 2012. – Vol. 43 (2). – P. 281–291. – https://doi.org/ 10.1111/j.1365-2109.2011.02826.x.

34. Optimizing Dietary Levels of Menhaden and Soybean Oils and Soybean Lecithin for Pre-Gonadal Somatic Growth in Juveniles of the Sea Urchin Lytechinus Variegatus / V.K. Gibbs, L.E. Heflin, W.T. Jones [et al.] // Aquaculture. – 2015. – Vol. 446 (1). – P. 198–205. – https://doi.org/ 10.1016/j.aquaculture.2015.05.013.

35. Трусов В.З. Метод определения степени зрелости половых желез самок осетровых // Рыбное хозяйство. – 1964. – № 1. – С. 26–28.

36. Филиппович Ю.Б., Егорова Т.А., Севастьянова Г.А. Практикум по общей биохимии. – М.: Просвещение, 1975. – 318 с.

37. Burstein M., Samaille J. Determination of serum betalipoproteins after selective precipitation of heparin // La Presse Medicale. – 1958. – Vol. 66. – P. 974–975.

38. Инструкция по физиолого-биологическим анализам рыбы / В.В. Лиманский, А.А. Яржомбек, Е.Н. Бекина, С.Б. Андронников. – М.: ВНИИПРХ, 1984. – 53 c.

39. Van Kampen E.J., Zijlstra W.G. Standardization of hemoglobin metry. II. The hemoglobin cyanide method // Clin. Chim. Acta. – 1961. – Vol. 6. – P. 538.

40. Лакин Г.Ф. Биометрия. – М.: Высш. шк., 1990. –293 с.

41. Лукьяненко В.И., Дубинин В.И., Сухопарова А.Д. Влияние экстремальных условий приплотинной зоны реки на осетровых рыб. – Рыбинск: Изд-во ИБВВ АН СССР им. И.Д. Папанина, 1990. – 272 с.

42. Лукьяненко В.И. Общая ихтиотоксикология. – М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. – 320 с.

43. Гаркави Л.Х,. Квакина Е.Б,. Уколова М.А. Адаптационные реакции и резистентность организма. – Ростов-н/Д: Изд-во РГУ, 1990. – 224 с.

44. Экологические мониторинговые исследования на лицензионном участке «Северный» ООО «Лукойл-Нижневолжскнефть» (1997–2006 гг.): [монография] / Д.Н. Катунин [и др.]; отв. ред. Г.А. Судаков, Д.Н. Катунин, Р.П. Ходороевская. – Астрахань: Изд-во КаспНИРХ, 2007. – 431 с.

45. Физиолого-биохимические закономерности созревания самок осетровых рыб / П.П. Гераскин, Г.Ф. Металлов, В.А. Григорьев, М.В. Яицкая // Аквакультура: мировой опыт и российские разработки: материалы всерос. науч. конф. (г. Ростов-на-Дону, 13–16 декабря 2017 г.). – Ростов-н/Д: Изд-во ЮНЦ РАН, 2017. – С. 493–496.

46. Строев Е.А. Биологическая химия. – М.: Высшая школа, 1986. – 479 с.

47. Гераскин П.П., Металлов Г.Ф., Аксенов В.П. Физиолого-биохимическая характеристика самок севрюги, используемых для искусственного воспроизводства // Осетровое хозяйство водоемов СССР. – Астрахань: Изд-во ЦНИИ осетрового хоз-ва, 1984. – С. 81–83.

48. Features of Changes in the Functional State of Sturgeon during Maturation in Closed WaterSupply Installations / E.N. Ponomareva, P.P. Geraskin, G.F. Metallov [et al.] // Inland Water Biology. – 2021. – Vol. 14, N 1. – P. 87–93. – https://doi.org/ 10.31857/S0320965221010113.

49. Оценка физиологической подготовленности к репродуктивной функции доместицированных самок белуги и выращенных от икры в искусственных условиях / П.П. Гераскин, А.В. Ковалева, В.А. Григорьев [и др.] // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. – 2019. –№ 4. – С. 95–103. – https://doi.org/10.24143/2073-5529-2019-4-95-103.

50. Уровень кортизола и показателей цитогенетического гомеостаза в организме рыб на фоне пробиотика споротермина / Е.М. Романова, Е.В. Спирина, В.В. Романов, Л.А. Шадыева // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. – 2020. – № 1 (49). – С. 79–84. – https://doi.org/10.18286/1816-4501-2020-1-79-84.

51. Selenium and/or vitamin E upregulate the antioxidant gene expression and parameters in broilers / F. Elgendey, F. Wakeel, R. Hemeda [et al.] // BMC Veterinary Research. – 2022. – Vol. 18 (1). – P. 310. – https://doi.org/10.1186/s12917-022-03411-4.

52. Vitamin nutrition in salmonid aquaculture: From avoiding deficiencies to enhancing functionalities / A. Liu, V.P.T H. To, E. Santigosa [et al.] // Aquaculture. – 2022. – Vol. 561 (738). – P. 738654. – https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738654.