Наследственная детерминация уровня аспартатаминотрансферазы у крупного рогатого скота голштинской породы

Рост, развитие и реализация продуктивных качеств сельскохозяйственных животных тесно взаимосвязаны ферментативными превращениями аминокислот, белков и других сложных азотистых соединений. Аспартатаминотрансфераза (АсТ) участвует в метаболизме аминокислот, в циклах мочевины, трикарбоновых кислот и глюконеогенезе. Уровень АсТ в крови зависит от многих паратипических и генетических факторов. В работе представлены результаты биохимического анализа содержания АсТ в сыворотке крови бычков голштинской породы в возрасте 12–13 месяцев, являющихся потомками четырех быков-производителей. Взятие крови осуществляли у животных с живой массой 330–365 кг, разводимых в условиях крупного животноводческого предприятия, расположенного на территории Западной Сибири. Уровень АсТ в сыворотке крови животных определяли колориметрическим методом РайтманаФренкеля с использованием реактивов «Трансаминаза АсТ Ново» (производитель «Вектор-Бест» Россия). Установлено, что среднее значение содержания АсТ в группах сыновей было ниже общепринятой физиологической нормы и по всем потомкам составило 22,44 ± 1,29 Е/л. Референсный интервал для АсТ на основе центрального 95%-го процентиля с указанием 90%-х доверительных интервалов составил 12,29 (8,67–15,91) – 34,84 (31,2–38,5) Е/л. Потомки разных отцов имели разную фенотипическую изменчивость показателя и различались по уровню АсТ. Так, потомки быка-производителя Brio характеризовались более высоким её уровнем в сравнении с сыновьями быков Malstrem и Fabio – в 1,69 и 1,8 раза соответственно. Выявленные различия указывают на наследственную детерминацию уровня АсТ у крупного рогатого скота голштинской породы. Сила влияния фактора отца составила 0,18. 

1. Содержание и изменчивость показателей азотистого обмена у крупного рогатого скота голштинской породы в условиях Западной Сибири / О.И. Себежко, Е.А. Климанова, К.Н. Нарожных [и др.] // Вестник НГАУ. – 2022. – № 3(64). – С. 125–133. – DOI 10.31677/2072-6724-2022-64-3-125-133.

2. Protein status of holshtinized Black and White cattle / O.I. Sebezhko, R.V. Mayer, E.I. Tarasenko [et al.] // Fundamental Scientific Research and Their Applied Aspects in Biotechnology and Agriculture (FSRAABA 2021): International Scientific and Practical Conference, Tyumen, 19–20 июля 2021 года. – Tyumen: EDP Sciences, 2021. – Vol. 36. – P. 06023.

3. Изменчивость трансаминаз у коров черно-пестрой породы / В. В. Виноградова, Е. В. Дергачева, В. А. Кунгурцева, О. С. Короткевич // Проблемы биологии и биотехнологии: сб. тр. конф. науч. о-ва студетов и аспирантов биол.-технол. фак., Новосибирск, 12–16 дек. 2016 г. / Новосиб. гос. аграр. ун-т. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2017. – С. 29–32.

4. Еременко В.И., Горожанкина Г.А., Стебловская С.Ю. Активность аспартатаминотрансферазы в крови лактирующих коров с разным уровнем продуктивности // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. – 2020. – № 6. – С. 24–26.

5. Еременко В.И., Карпенкова К.В. Ферментативный профиль крови у лактирующих коров с разным уровнем продуктивности // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. – 2015. – № 2. – С. 69–70.

6. Воронина Т.Ю., Кочуева Н.А. Активность ферментов крови коров костромской породы с разным уровнем молочной продуктивности // Вестник ветеринарии. – 2012. – № 4(63). – С. 75–76.

7. Фенотипическая изменчивость активности ферментов полновозрастных овцематок романовской породы в условиях Кузбасса / И.Н. Морозов, О.И. Себежко, Е.И. Тарасенко, Е.А. Климанова // Достижения науки и техники АПК. – 2022. – Т. 36, № 6. – С. 61–65. – DOI: 10.53859/02352451_2022_36_6_61.

8. Влияние быков-производителей голштинской породы на уровень мочевины в сыворотке крови / О.И. Себежко, К.Н. Нарожных, О.С. Короткевич [и др.] // Зоотехния. – 2021. – № 7. – С. 17–20. – DOI: 10.25708/ZT.2021.93.50.004.

9. Изменчивость показателей азотистого обмена коров черно-пестрой породы в условиях Кузбасса / Е.И. Тарасенко, О.И. Себежко, А.В. Ковалев, И.Н. Морозов // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий: сб. V Всерос. (нац.) науч. конф., Новосибирск, 18 дек. 2020 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2020. – С. 256–259.

10. Ферментативный статус коров крупного рогатого скота холмогрской породы / О.И. Себежко, О.С. Короткевич, Д.М. Слобожанин, Е.Ю. Росина // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий: сб. IV Всерос. (нац.) науч. конф., Новосибирск, 20 дек. 2019 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2019. – С. 97–99.

11. Липидный статус овцематок романовской породы на юге Западной Сибири / И. Н. Морозов, О. И. Себежко, Е. И. Тарасенко, Е. А. Климанова // Достижения науки и техники АПК. – 2022. – Т. 36, № 7. – С. 71–76. – DOI: 10.53859/02352451_2022_36_7_71.

12. Современные аспекты метаболизма холестерина у крупного рогатого скота / О.И. Себежко, К.Н. Нарожных, О.С. Короткевич [и др.] // Вестник НГАУ. – 2021. – № 2(59). – С. 91–105. – DOI: 10.31677/2072-6724-2021-59-2-91-105.

13. Targeting aspartate aminotransferase in breast cancer / J.M. Thornburg, K.K. Nelson, B.F. Clem [et al.] // Breast Cancer Res. – 2008. – N. 10 (5). – R84. – DOI: 10.1186/bcr2154.

14. Contributions of Mitochondrial Dysfunction to β Cell Failure in Diabetes Mellitus / J. Parnis, A. Rutter Guy // Mitochondria in Obesity and Type 2 Diabetes. – Academic Press, 2019. – P. 217–243.

15. Изменчивость некоторых биохимических показателей у голштинизированных черно-пестрых коров Западной Сибири / О.И. Себежко, Д.А. Александрова, А.В. Ковалев, И.Н. Морозов // Модернизация аграрного образования: cб. науч. тр. по материалам VII Междунар. науч.-практ. конф., Томск, 14 дек. 2021 г. – Томск; Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2021. – С. 1135–1138.

16. Особенности метаболического статуса коров голштинской породы с высоким уровнем продуктивности в период лактации / Д. А. Александрова, О. И. Себежко, А. В. Ковалев, И. Н. Морозов // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий: сб. VI Всерос. (нац.) науч. конф. с междунар. участием. Новосибирск, 20 дек. 2021 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2021. – С. 249–251.

17. Genome-wide association study identifies genetic variants in GOT1 determining serum aspartate aminotransferase levels/ H. Shen, C. Damcott, S. Shuldiner [et al.] // Journal of Human Genetics. – 2011. – N 56 (11). – P. 801–805. – DOI: 10.1038/jhg.2011.105.

18. A heterozygous mutation in GOT1 is associated with familial macro-aspartate aminotransferase/ М. Kulecka, А. Wierzbicka, А. Paziewska [et al.] // Journal of Hepatology. – 2017. – N 67 (5). – P. 1026–1030. – DOI: 10.1016/j.jhep.2017.07.003.

19. Макро-аспартатаминотрансфераза / Н.Н. Силивончик, А.И. Ледник, О.П. Левчук [и др.] // Гепатология и гастроэнтерология. – 2021. – Т. 5, № 1. – С. 25–29.

20. Mapping of quantitative trait loci affecting resistance/susceptibility to Sarcocystis miescheriana in swine/ G. Reiner, D. Kliemt, H. Willems [et al.] / Genomics. – 2007. – N 89. – P. 638–646.

21. Reiner G., Clemens N., Lohner E. SNPs in the porcine GOT1 gene improve a QTL for serum aspartate aminotransferase activity on SSC14 // Anim Genet. – 2010. – Jun; Vol. 41 (3). – P. 319–323. – DOI: 10.1111/j.1365-2052.2009.01997.x.].

22. RNA-Seq Analysis Identifies Differentially Expressed Genes in the Longissimus dorsi of Wagyu and Chinese Red Steppe Cattle / G. Li, R. Yang, X. Lu [et al.] // Int. J. Mol. Sci. – 2023. – N 24. – P. 387. – https://doi.org/10.3390/ijms24010387.

23. Genomewide Association Analyses of Lactation Persistency and Milk Production Traits in Holstein Cattle Based on Imputed Whole-Genome Sequence Data/ V.B. Pedrosa, F.S. Schenkel, S-Y. Chen [et al.] // Genes. – 2021. – N 12 (11). – P. 1830.

24. Genome-wide association study of milk fatty acid composition in Italian Simmental and Italian Holstein cows using single nucleotide polymorphism arrays / V. Palombo, M. Milanesi, S. Sgorlon [et al.] // J. Dairy Sci. – 2018. – N 101. – P. 11004–11019.

25. Combined transcriptome and proteome analyses reveal differences in the longissimus dorsi muscle between Kazakh cattle and Xinjiang brown cattle/ X. Yan, J. Wang, H. Li [et al.] // Anim Biosci. – 2021. – N 34 (9). – P. 1439–1450.

26. Comparative assessment of radioactive strontium and cesium contents in the feedstuffs and dairy products of western Siberia / O.I. Sebezhko, V.L. Petukhov, O.S. Korotkevich [et al.] // Indian journal of ecology. – 2017. – Vol. 44, N 3. – P. 662–666.

27. Influence of anthropogenic pollution on interior parameters, accumulation of heavy metals in organs and tissues, and the resistance to disorders in the yak population in the republic of Tyva / O.I. Sebezhko, V.L. Petukhov, N.I. Shishin [et al.] // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. – 2017. – Vol. 9, N 9. – P. 1530–1535.

28. Manganese content in muscles of sons of different Holstein bulls reared in Western Siberia / K.N. Narozhnykh, O.I. Sebezhko, T.V. Konovalova [et al.] // Trace Elements and Electrolytes. – 2021. – Vol. 38, N 3. – P. 149.

29. Lead Content in Soil, Water, Forage, Grains, Organs and the Muscle Tissue of Cattle in Western Siberia (Russia) / K.N. Narozhnykh, T.V. Konovalova, J.I. Fedyaev [et al.] // Indian journal of ecology. – 2018. – Vol. 45, N 4. – P. 866–871.

30. Characterizing physiological status in three breeds of bulls reared under ecological and climate conditions of the Altai region / L.V. Osadchuk, M.A. Kleshchev, O.I. Sebezhko [et al.] // Iraqi journal of veterinary sciences . – 2017. – Vol. 31, N 1. – P. 35–42. – DOI: 10.33899/ijvs.2017.126708.

31. Content of 137Cs and 90Sr in the forages of various ecological zones of Western Siberia / O.S. Korotkevich, V.L. Petukhov, O.I. Sebezhko [et al.] // Russian agricultural sciences. – 2014. – Vol. 40, N 3. – P. 195–197.

32. Макрои микроэлементы в почвах и кормовых травах прифермерских полей Барнаульского Приобья / А.И. Сысо, М.А. Лебедева, С.А. Худяев [и др.] // Вестник НГАУ. – 2017. – № 3 (44). – С. 54–61.

33. Элементный статус крови крупного рогатого скота голштинской породы в биогеохимических условиях Кемеровской области / Н.И. Шишин, О.И. Себежко, Ю.И. Федяев [и др.] // Вестник НГАУ. – 2017. – № 3 (44). – С. 70–79.

34. Ермишин А.С., Тимаков А.В. Биохимические показатели адаптации коров разных пород в условиях. Ярославской области // Вестник АПК Верхневолжья. – 2015. – № 4. – С. 29–39.

35. Биологическая ценность комплексной минеральной добавки для лактирующих коров / Г.А. Симонов, М.А. Степурина, А.Т. Варакин [и др.] // Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее профессиональное образование. – 2022. – № 2 (66). – С. 238–247.

36. Изучение метаболического статуса коров на фоне применения профилактических препаратов / Н.Ю. Беляева, А.И. Ашенбреннер, Ю.А. Чекункова [и др.] // Вестник НГАУ. – 2019. – № 3. – C. 74–81.

37. Особенности белкового обмена у быков-производителей разных возрастов / Н.В. Боголюбова, И.В. Гусев, Р.А. Рыков [и др.] // Молочное и мясное скотоводство. – 2019. – № 3. – С. 38–41

38. Комбарова Н., Абилов А. Диспансеризация быков-производителей по состоянию иммунной системы и биохимии крови // Молочное и мясное скотоводство. – 2009. – № 3. – С. 30–32.

39. Зарипов Р.У., Миннебаев И.Р., Алимов А.М. Состяние белкового, липидного обмена и резистентности быков-производителей голштинской породы // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2022. – Т. 251, № 3. – С. 120–123.

40. Metabolic adaptation in first week after calving and early prediction of ketosis type I and II in dairy cows / Biljana Delić, Branislava Belić, M.R. Cincović [et al.] // Large Animal. – 2020. – N 26 (2): Large Animal Review (LAR).

41. Metabolic alterations in dairy cows with subclinicalketosis after treatment with carboxymethyl chitosan-loaded, reduced glutathione nanoparticles / C. Zhao, Y. Bai, S. Fu [et al.] // J. Vet Intern Med. – 2020. – № 34. – P. 2787–2799.

42. Subclinical ketosis risk prediction in dairy cows based on prepartum metabolic indices / D. Wang, D. Yu, C. Zhao [et al.] // Veterinary Medicine Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. – 2021. – N 73 (01). – P. 11–17.

43. Иванюк В. П., Бобкова Г.Н. Влияние нарушений биохимического статуса крови глубокостельных коров на заболеваемость телят // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. – 2022. – № 1 (93). – С. 141–145.

44. The evaluation of superoxide dismutase activity, neutrophil function, and metabolic profile in cows with retained placenta / M.O. Yazlık, H.E. Çolakoğlu, M. Pekcan [et al.] // Theriogenology. – 2019. – N 128. – P. 40–46.

45. Камалдинов Е.В., Себежко О.И. Уровень выраженности и изменчивости количественных признаков, характеризующихся негауссовским распределением // Аграрная наука – сельскохозяйственному производству Сибири, Казахстана, Монголии, Беларуси и Болгарии: сб. науч. докл. XX Междунар. науч.-практ. конф., Новосибирск, 4–6 окт. 2017 г. – Новосибирск, 2017. – Т. 1. – С. 194–196.

46. Белковый состав, активность аминотрансфераз сыворотки крови и показатели естественной резистентности тёлок разных генотипов / Е.А. Никонова, И.В. Миронова, Т.Н. Коков [и др.] // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. – 2022. – № 3 (95). – С. 307–311.

47. Абилов А.И., Ивасюк А.П., Новгородова И.П. Белково-липидный обмен быков-производителей в условиях Ленинградской области // Зоотехния. – 2021. – № 7. – С. 25–29. – DOI: 10.25708/ZT.2021.52.90.006.

48. Белковый состав, активность трансаминаз сыворотки крови и показатели естественной резистентности бычков мясной породы /В.В. Толочка, Б.Д. Гармаев, Д.Ц. Гармаев [и др.] // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова. – 2022. – № 2 (67). – С. 109–115.

49. ASVCP reference interval guidelines: determination of de novo reference intervals in veterinary species and other related topics / K.R. Friedrichs, K.E. Harr, K.P. Freeman [et al.] // Veterinary clinical pathology. – 2012. – Vol. 41, N 4. – P. 441–453.

50. Defining, establishing, and verifying reference intervals in the clinical laboratory – 3th ed.; CLSI Document C28-A3c. Approved guideline. – Wayne, Pa., USA: CLSI, 2010. – 59 p.

51. CLSI Document C28-A3c. Defining, establishing, and verifying reference intervals in the clinical laboratory; approved guideline – third edition. – Wayne, Pa., USA: CLSI, 2010.