ЗАВИСИМОСТЬ УРОВНЯ ИНФИЦИРОВАННОСТИ САЛЬМОНЕЛЛАМИ В ПОПУЛЯЦИЯХ КУР ОТ АНТАГОНИСТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ LACTOBACILLACEAE И ENTEROCOCCACEAE В ОТНОШЕНИИ SALMONELLA ENTERICA

Антагонистическая активность лактобактерий в кишечнике в отношении различных энтеропатогенных микроорганизмов может варьировать в широких пределах, в т. ч. в зависимости от видового состава лактобиоты кишечника. Цель настоящей работы заключалась в определении антагонистической активности представителей отряда Lactobacillales, выделенных от кур на птицефабриках с разными уровнями инфицированности сальмонеллами. Тест-объектом являлись куры родительского стада и цыплята-бройлеры кроссов Ross 308 и Hubbard F-15 с пяти птицефабрик. Три птицефабрики характеризовались низким уровнем инфицированности птицы сальмонеллами (менее 5 % по клоакальным смывам в ПЦР и отсутствие выделения сальмонелл из пищевой продукции). Две птицефабрики отличались высоким уровнем инфицированности сальмонеллами (инфицированность птицы по клоакальным смывам более 10 % и официальное неблагополучие по сальмонеллезу ввиду выделения культур сальмонелл в пищевой продукции). Уровень инфицированности оценивали методом ПЦР в режиме реального времени после предварительного субкультивирования клоакальных смывов на бульоне Шэдлера. Антагонистическую активность лактобактерий и родственных видов бактерий, выделенных от этих же кур, проводили в тестах по сокультивировнию на бульоне Шэдлера с последующим выявлением сальмонелл на RVS-бульоне. Птицефабрики с низким уровнем инфицированности сальмонеллами характеризовались наличием L. reuteri в качестве мажорного компонента лактобиоты кишечника и обладали более высокой антагонистической активностью в отношении большего числа культур сальмонелл (отношение шансов (OR) 17,33 (СI 95= 5,990–50,077)).

лактобактерии, сальмонелла, антагонистическая активность, куры

1. Павлова Н. В., Киржаев Ф. С., Лапинскайте Р. Значение нормальной микрофлоры пищеварительного тракта птиц для их организма // БИО. – 2002. – № 1. – С. 4–8.

2. Успешный выбор кормовых добавок для сельскозяйственной птицы зависит от точного знания микрофлоры кишечника / Г. Ю. Лаптев, Л. А. Ильина, К. В. Нагорнова [и др.] // Intern. conf. «High-throughput sequencing in genomics». Novosibirsk. July 21–25. – 2013. – P. 43.

3. Биологическая характеристика штаммов лактобацилл, перспективных в качестве эубиотиков/ Е. М. Горская, Н. Н. Лизько, А. А. Ленцнер [и др.] // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 1992. – № 3. – С. 17–20.

4. Антагонистическая активность лактобактерий из кишечника сельскохозяйственной птицы в отношении клинических изолятов Salmonella enterica / В. Н. Афонюшкин, И. Н. Троменшлегер, М. Л. Филипенко [и др.], // Бюл. экспериментальной биологии и медицины. – 2016. – № 6. – С. 757–760.

5. Casas I.A, Dobrogosz W. J. Lactobacillus reuteri: an overview of a new probiotic for humans and animals // Microecol. Therap. – 1997. – Vol. 25. – P. 221–31.

6. Механизмы биологической активности системы Lactobacillus reuteri – реутерин / В. Н. Афонюшкин, М. Л. Филипенко, А. Н. Ширшова [и др.] //Сиб. вестн. с-х науки. – 2013. – № 4. – С. 70–75.

7. Молекулярно-биологические методы контроля сальмонеллезов: метод. рекомендации / В. Н. Афонюшкин, Т. В. Сподырева, Ю. Г. Юшков, В. Ю. Коптев. – Новосибирск, 2011. – 63 с.

8. Production and isolation of reuterin, a growth inhibitor produced by Lactobacillus reuteri / T. L. Talarico, I. A. Casas, T. C. Chung, W. J. Dobrogosz // Antimicrob. Agents Chemother. – 1988. – Vol. 32, N 12. – P. 1854–1858.

9. Zhang D., Li R., Li J. Lactobacillus reuteri ATCC 55730 and L22 display probiotic potential in vitro and protect against Salmonella-induced pullorum disease in a chick model of infection // Res. Vet. Sci. – 2012. – Vol. 93, N. 1. – P. 366–373.

10. Comparative genome analysis of Lactobacillus reuteri and Lactobacillus fermentum reveal a genomic island for reuterin and cobalamin production / H. Morita, H. Toh, S. Fukuda [et al.] // DNA Res. – 2008. – Vol. 15, N 3. – P. 151–161.

11. The antimicrobial compound reuterin (3-hydroxypropionaldehyde) induces oxidative stress via interaction with thiol groups / L. Schaefer, T. A. Auchtung, K. E. Hermans [et al.] // Microbiology. – 2010. – Vol. 156, N. Pt 6. – P. 1589–1599.

12. Inhibitory activity of reuterin, nisin, lysozyme and nitrite against vegetative cells and spores of dairy-related Clostridium species/ M. Avila, N. Gomez-Torres, M. Hernandez, S. Garde // Int. J. Food Microbiol. – 2014. – Vol. 172. – P. 70–75.

13. In vitro and in vivo characterization and strain safety of Lactobacillus reuteri NCIMB 30253 for probiotic applications/ I. Sulemankhil, M. Parent, M. L. Jones [et al.] // Can. J. Microbiol. – 2012. – Vol. 58, N 6. – P. 776–87.

14. Production of a Broad Spectrum Antimicrobial Substance by Lactobacillus reuteri / T. Axelsson, T. Chung, T. Dobrogosz, S. Lindgren // Microb. Ecol. Health Dis. – 1989. – Vol. 2, N 2. – P. 131–136.

15. Evaluating the efficacy of an avian-specific probiotic to reduce the colonization of Campylobacter jejuni in broiler chickens/ K. Ghareeb, W. A. Awad, M. Mohnl [et al.] // Poult. Sci. – 2012. – Vol. 91, N 8. – P. 1825–32.

16. Современные методы контроля сальмонеллёза/ В. Н. Афонюшкин, Е. В. Дударева, Л. И. Малахеева [и др.] // Птицеводство. – 2008. – № 9. – С. 43–44.

17. Chemically induced mouse models of intestinal inflammation/ S. Wirtz, C. Neufert, B. Weigmann, M. F. Neurath// Nat. Protoc. – 2007. – Vol. 2. – P. 541–546.